СРАВНИТЕЛЬНЫЕ ДАННЫЕ ПО СОДЕРЖАНИЮ МИКРОЯДЕР В ЭРИТРОЦИТАРНЫХ КЛЕТКАХ ПРУДОВЫХ ЛЯГУШЕК, ОБИТАЮЩИХ В ЗАГРЯЗНЕННОЙ ВОДНОЙ СРЕДЕ

1. Акуленко Н.М. Сосудистое русло как часть гемопоэтической системы бесхвостых амфибий // Вестник зоологии. 2011. Т. 43, №. 4. С. 359-366.

2. Башлыкова Л.А. Наследование цитогенетических и молекулярно-клеточных эффектов в клетках костного мозга животных при хроническом воздействии ионизирующего излучения // Известия Самарского научного центра РАН. 2017. Т. 19 № 2(3). С. 420-425.

3. Бекиш В.Я., Колмогоров В.И., Побяржин В.В. Микроядерный тест в клетках мозга и семенников мышей линии CBA при гельминтозах // Вестник ВГМУ. 2003. Т. 2, №. 2. С. 67-72.

4. Гематология. Новейший справочник / Под ред. К.М. Абдулкадырова. СПб.: Изд-во Сова, 2004. 928 с.

5. Гольдберг Д.И. Гематология животных. Томск: Изд-во ТГУ, 1973. 182 с.

6. Жулева Л.Ю., Дубинин Н.П. Использование микроядерного теста для оценки экологической обстановки в районах Астраханской области // Генетика. 1994. Т. 30, № 7. С. 999-1004.

7. Игнатова И.В., Епринцев С.А., Калаев В.Н. и др. Оценка состояния среды водных экосистем в районе крупных горнодобывающих предприятий (на примере Павловского горно-обогатительного комбината) // Современные проблемы науки и образования. 2016. №. 6. С. 573-583.

8. Кармазин А.П., Пескова Т.Ю. Использование гематологических показателей озерной лягушки Rana ridibunda (Pallas 1771) для определения зоны токсического действия нефти // Современная герпетология. 2010. Т. 1, №. ½. С. 3-7.

9. Ковалева О.А. Цитогенетические аномалии в соматических клетках млекопитающих // Цитология и генетика. 2008. № 1. С. 58-72.

10. Красавин Е.А., Говорун Н.Л., Шмакова И.В. и др. Генетическое действие излучений с разными физическими характеристиками на клетки человека и млекопитающих // Физика элементарных частиц и атомного ядра. 2004. Т. 35, №. 6. С. 1-30.

11. Крюков В.И. Модифицирование импульсным электромагнитным полем индуцируемых свинцом частот микроядер в эритроцитах личинок бесхвостых амфибий // Экология. 2000. № 3. С. 238-240.

12. Манских В.Н. К вопросу о механизмах образования микроядер в соматических клетках бесхвостых амфибий в норме и при действии N нитрозо-N метилкарбамида // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2006. Т. 141, №. 2. С. 217-220.

13. Петров Р.В. Иммунология. М: Медицина. 1982. 308 с.

14. Побяржин В.В., Бекиш В.Я. Нарушения в геноме хозяина при экспериментальном гименолепидозе в зависимости от дозы введенного инвазионного материала при заражении // Вестник ВГМУ. 2003. Т.3, №. 4. С. 85-89.

15. Романова Е.Б., Шаповалова К.В., Рябинина Е.С. Лейкоцитарный состав крови и микроядра в эритроцитах амфибий загрязненных водных объектов Нижегородской области // Принципы экологии. 2018. № 2. С. 125-139.

16. Смирнова В.М., Макеев И.С., Благодаткин А.В. Метод комплексной оценки загрязненности поверхностных вод по гидрохимическим показателям. Определение удельного комбинаторного индекса загрязненности воды (УКИЗВ) и класса качества воды. Нижний Новгород, 2011. 19 с.

17. Хамидов Д.Х., Акилов А.Т., Турднева А.А. Кровь и кроветворение у позвоночных животных. Ташкент: Фан, 1978. 168 c.

18. Чертков И.Л., Фриденштейн А.Я. Клеточные основы кроветворения (кроветворные клетки-предшественники). М.: Медицина, 1977. 274 с.

19. Pincu M, Callisen H, Norman A. DNA content of micronuclei in human lymphocytes / Int. J Radiat Biol. 1985. Vol. 47. P. 423-432.

20. Carvalho W.F., Ruiz de Arcaute C., Perez-Iglesias J.M. et al. DNA damage exerted by mixtures of commercial formulations of glyphosate and imazethapyr herbicides in Rhinella arenarum (Anura, Bufonidae) tadpoles // Ecotoxicology. 2019. Vol. 28. P. 367-377.

21. Castle W., Minot G. Pathologic physiology and clinical description of the anemia. Oxford University Press. N.Y., 1936. 132 p.

22. Catalan J., Falck G.C. M., Norppa H. The X chromosome frequently lags behind in female lymphocyte anaphase // Am. J. Hum. Genet. 2000. Vol. 66. P. 687-691.

23. Charlemagne J. Methodological Aspects of the differentiation of blood elements in the Axolot Ambystome mexicanum Shawn // Z. Zellforsch. 1972. Vol. 123. P. 224-239.

24. Cliet I., Melcion C., Cordier A. Lack of productivity of bone marrow micronucleus test versus testis micronucleus test: comparison with four carcinogens // Mutat. Res. 1993. Vol. 292. P. 105-111.

25. Do Amaral D.F., Guerra V., Gonçalves A., et al. Ecotoxicity of nanomaterials in amphibians: A critical review // Science of the Total Environment. 2019. Vol. 686. P. 332-344.

26. Falck G.C. M., Catalan J., Norppa H. Nature of anaphase laggards and micronuclei in female cytokinesis-blocked lymphocytes // Mutagenesis. 2002. Vol. 17 (2). P. 111-117.

27. Norppa H., Falck G.C. M. What do human micronuclei contain? // Mutagenesis. 2003. Vol. 18 (3). P. 221-223.

28. Norppa H., Luomahaara S., Heikanen H. et al. Micronucleus assay in lymphocytes as a tool to biomonitor human exposure to aneuploidogens and clastogens // Environmental Health Perspectives Supplements. 1993. Vol. 101 (3). P. 139-143.

29. Nusse M, Kramer J. Flow Cytometric Analysis of Micronuclei Found in Cells After Irradiation // Cytometry. 1984. Vol. 5. P. 20-25.

30. Romanova E.B., Ryabinina E.S. Cytogenetic Аррrоасh to Primary Assessment of Habitat Quality // Opera Med Physiol. 2018. Vol. 4 (1). P. 19-22.

31. Yu Ma, Bo Li, Yang Ke, Yu Hui. Zhang Effects of low doses Trichlorfon exposure on Rana chensinensis tadpoles // Environmental Toxicology. 2019. Vol. 34. P. 30-36.